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Biology版 - 突变一个氨基酸,蛋白分子量变大
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请教蛋白的Sumo修饰问题。聪明的你进来活跃下大脑
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熟悉IP的同学帮帮忙如何解释
Western蛋白分子量变大很多是什么情况?请问有没有抑制磷酸化的化合物?
再问基因克隆纯化蛋白后蛋白质分子量不对的问题。NgAgo-Cell Research文中有没有只转磷酸化的ssDNA组
相关话题的讨论汇总
话题: 蛋白话题: 突变话题: 磷酸化话题: 氨基酸话题: 20kd
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1 (共1页)
v**p
发帖数: 15
1
请教大家,把一个蛋白其中的一个氨基酸进行点突变之后,western检测的时候发现分
子量大了20KD左右,有可能是啥原因? 测序没有问题,抗体也能识别。
谢谢
s******y
发帖数: 28562
2
只有一条带么?如果能看到两条带的话,很可能是mono-ubiquitinylation(18kd)
or SUMO
当然,也不能排除磷酸化

【在 v**p 的大作中提到】
: 请教大家,把一个蛋白其中的一个氨基酸进行点突变之后,western检测的时候发现分
: 子量大了20KD左右,有可能是啥原因? 测序没有问题,抗体也能识别。
: 谢谢

v**p
发帖数: 15
3
只有一条带, 比正常大 大约20kd的位置,这个蛋白其它氨基酸点突变都很正常,就是
这个突变这个样子的。

【在 s******y 的大作中提到】
: 只有一条带么?如果能看到两条带的话,很可能是mono-ubiquitinylation(18kd)
: or SUMO
: 当然,也不能排除磷酸化

s**2
发帖数: 1287
4
说说你把啥突变成啥了?我们也学习学习

【在 v**p 的大作中提到】
: 只有一条带, 比正常大 大约20kd的位置,这个蛋白其它氨基酸点突变都很正常,就是
: 这个突变这个样子的。

s******y
发帖数: 28562
5
这个就不像是posttranslational modification了,否则至少能看到主带的。
可能就是因为突变的氨基酸是带电的,所以改变了蛋白结合SDS的性质,导致
在胶里跑起来不一样。
要确认这个的话,把纯化的蛋白送去飞一下质谱MALDI-TOF看看真实分子量到底
有多大

【在 v**p 的大作中提到】
: 只有一条带, 比正常大 大约20kd的位置,这个蛋白其它氨基酸点突变都很正常,就是
: 这个突变这个样子的。

T**********t
发帖数: 1604
6
嗯,质谱看的分子量才靠谱,跑胶只能毛估估的。
还想到一个可能,是不是这个质粒上出现了读码框位移突变啊。不过那样的话好像抗体
应该不太可能识别。还是做个质谱先确认一下吧,比跑胶快多了。
v**p
发帖数: 15
7
看来只能这样了

【在 s******y 的大作中提到】
: 这个就不像是posttranslational modification了,否则至少能看到主带的。
: 可能就是因为突变的氨基酸是带电的,所以改变了蛋白结合SDS的性质,导致
: 在胶里跑起来不一样。
: 要确认这个的话,把纯化的蛋白送去飞一下质谱MALDI-TOF看看真实分子量到底
: 有多大

h*****t
发帖数: 1226
8
那也要看你的抗体是识别哪一段了...

【在 T**********t 的大作中提到】
: 嗯,质谱看的分子量才靠谱,跑胶只能毛估估的。
: 还想到一个可能,是不是这个质粒上出现了读码框位移突变啊。不过那样的话好像抗体
: 应该不太可能识别。还是做个质谱先确认一下吧,比跑胶快多了。

p*********g
发帖数: 9527
9
maybe you accidentally mutated a protein splicing recognition cite, so now
you are detecting the precursor instead of the mature one?
t******y
发帖数: 716
10
mono-ubiquitinylation 应该到不了18kd,ubiquitin的分子量7.6kd。

【在 s******y 的大作中提到】
: 只有一条带么?如果能看到两条带的话,很可能是mono-ubiquitinylation(18kd)
: or SUMO
: 当然,也不能排除磷酸化

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V***b
发帖数: 3419
11
有可能是糖基化了。你说说突变了什么,周边序列是什么。
s******y
发帖数: 28562
12
最近比较晕,别笑我啊。 呵呵。

【在 t******y 的大作中提到】
: mono-ubiquitinylation 应该到不了18kd,ubiquitin的分子量7.6kd。
s*****r
发帖数: 223
13
我搭车问一个,磷酸化的功能。
我做的一个蛋白,正常情况下在核内(RNA/DNA binding protein),我诱导细胞凋亡后
,它跑到细胞质,并且磷酸化(ser/thr)(大概10KD左右)。现在知道这个蛋白突变会引
起凋亡。
我现在在设计实验,想知道这个磷酸化的功能意义。
我是新手(应该多读点文献),
不知道磷酸化,1。跟蛋白的降解是否有关系?
2。磷酸化RNA/DNA binding protein 的功能关系?
3。其它还有啥可能
谢谢
s******y
发帖数: 28562
14
磷酸化和降解可以有间接关系,和很多蛋白的结合也可能有关系,还是和
非常非常多的通路都可能有关系, 所以很难直接推测。
一般是把磷酸化的氨基酸突变了,看看会引起什么表型,然后再推测。
可以突变成不能磷酸化的集团,或者把serine, thronine变glutamate 来
模拟磷酸化后的结果

【在 s*****r 的大作中提到】
: 我搭车问一个,磷酸化的功能。
: 我做的一个蛋白,正常情况下在核内(RNA/DNA binding protein),我诱导细胞凋亡后
: ,它跑到细胞质,并且磷酸化(ser/thr)(大概10KD左右)。现在知道这个蛋白突变会引
: 起凋亡。
: 我现在在设计实验,想知道这个磷酸化的功能意义。
: 我是新手(应该多读点文献),
: 不知道磷酸化,1。跟蛋白的降解是否有关系?
: 2。磷酸化RNA/DNA binding protein 的功能关系?
: 3。其它还有啥可能
: 谢谢

s*****r
发帖数: 223
15
thanks.

【在 s******y 的大作中提到】
: 磷酸化和降解可以有间接关系,和很多蛋白的结合也可能有关系,还是和
: 非常非常多的通路都可能有关系, 所以很难直接推测。
: 一般是把磷酸化的氨基酸突变了,看看会引起什么表型,然后再推测。
: 可以突变成不能磷酸化的集团,或者把serine, thronine变glutamate 来
: 模拟磷酸化后的结果

b*****l
发帖数: 9499
16
先看是不是在 RNA level 的变化:PCR 钓出相关的 mRNA 再转 cDNA 测序看一下 mRNA
的长度和构成有没有变化,isoforms 都有哪些,是不是 splicing/modification 有
不同。有条件的话,RNA-seq 一下。
另外,有没有试试在 E. coli. 里面和原来的 gene side-by-side 地表达一下?

【在 v**p 的大作中提到】
: 请教大家,把一个蛋白其中的一个氨基酸进行点突变之后,western检测的时候发现分
: 子量大了20KD左右,有可能是啥原因? 测序没有问题,抗体也能识别。
: 谢谢

s******y
发帖数: 28562
17
他这个貌似是用recombinant DNA 作的,应该不存在这个剪切的问题吧?
就算不小心引入突变后把原来的cDNA 变成了intron出现了剪切,也应该是
被剪的更小.

mRNA

【在 b*****l 的大作中提到】
: 先看是不是在 RNA level 的变化:PCR 钓出相关的 mRNA 再转 cDNA 测序看一下 mRNA
: 的长度和构成有没有变化,isoforms 都有哪些,是不是 splicing/modification 有
: 不同。有条件的话,RNA-seq 一下。
: 另外,有没有试试在 E. coli. 里面和原来的 gene side-by-side 地表达一下?

b*****l
发帖数: 9499
18
我是在猜,会不会因为这个突变导致了 post-transcriptional modification 的不同
,比如说某个片段在 w.t. 的 mRNA 中被 splice 掉了,而在 mut 里则没有。估计 lz
说的 sequence 没问题是指 PCR 了一下 mut 点附近的位置的 mRNA?
另外一个可能性就是 post-translational modification。所以建议在 E.Coli. 里重
复一下 mut vs w.t. 看一看。
当然了,最直接的方法是用 MS 做个 protein sequencing -- 这个俺就更不熟了。

【在 s******y 的大作中提到】
: 他这个貌似是用recombinant DNA 作的,应该不存在这个剪切的问题吧?
: 就算不小心引入突变后把原来的cDNA 变成了intron出现了剪切,也应该是
: 被剪的更小.
:
: mRNA

s******y
发帖数: 28562
19
这种错误的可能性不高。
因为他们应该是直接用的cDNA, 不可能没有注意到产物比预计的短。
你说的这种错误只有在knock in 的时候才会出现。但是我不认为他们奢侈到了
不在细胞里先测试就上knock in 的地步。
除非楼主其实是用酵母作表达模型,才有这个可能性(直接上genomic Knock in)。

lz

【在 b*****l 的大作中提到】
: 我是在猜,会不会因为这个突变导致了 post-transcriptional modification 的不同
: ,比如说某个片段在 w.t. 的 mRNA 中被 splice 掉了,而在 mut 里则没有。估计 lz
: 说的 sequence 没问题是指 PCR 了一下 mut 点附近的位置的 mRNA?
: 另外一个可能性就是 post-translational modification。所以建议在 E.Coli. 里重
: 复一下 mut vs w.t. 看一看。
: 当然了,最直接的方法是用 MS 做个 protein sequencing -- 这个俺就更不熟了。

k******0
发帖数: 1073
20
lz找到原因了没?通知一下。
相关主题
聪明的你进来活跃下大脑请问有没有抑制磷酸化的化合物?
以前看过的 生物版的霸王别姬,至今记忆深刻NgAgo-Cell Research文中有没有只转磷酸化的ssDNA组
如何解释请教基因克隆纯化蛋白后蛋白质分子量不对的问题。
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s********n
发帖数: 2939
21
我之前也遇到过,不过是在E. coli里表达的蛋白,单个氨基酸突变导致蛋白变大很多
(30 kDa,大概double),SDS-PAGE观察到的,没做western,不是主要问题就放一边
了,现在想起来,还是没想通为什么。
s******y
发帖数: 28562
22
因为SDS-PAGE其实不是看分子量的可靠方式。
蛋白在胶里跑的速度和结合的SDS的量有关,和蛋白本身的构型也有一定关系。
经典生化里粗略的认为蛋白在SDS里面变性之后都是杆状的,这个对于大部分
蛋白是对的,但是对于某些比较特殊的蛋白并不符合事实。

【在 s********n 的大作中提到】
: 我之前也遇到过,不过是在E. coli里表达的蛋白,单个氨基酸突变导致蛋白变大很多
: (30 kDa,大概double),SDS-PAGE观察到的,没做western,不是主要问题就放一边
: 了,现在想起来,还是没想通为什么。

s********n
发帖数: 2939
23
呵呵,的确是这么说,只是做了这么多的突变只发现这样一个例外的确是觉得挺奇怪的。

【在 s******y 的大作中提到】
: 因为SDS-PAGE其实不是看分子量的可靠方式。
: 蛋白在胶里跑的速度和结合的SDS的量有关,和蛋白本身的构型也有一定关系。
: 经典生化里粗略的认为蛋白在SDS里面变性之后都是杆状的,这个对于大部分
: 蛋白是对的,但是对于某些比较特殊的蛋白并不符合事实。

D****g
发帖数: 275
24
是不是膜蛋白?如果是的话,很有可能是糖基化,可以用糖基化剪切酶十一时.

【在 v**p 的大作中提到】
: 请教大家,把一个蛋白其中的一个氨基酸进行点突变之后,western检测的时候发现分
: 子量大了20KD左右,有可能是啥原因? 测序没有问题,抗体也能识别。
: 谢谢

t****p
发帖数: 1504
25
我以前也曾看到类似现象,就是一个蛋白有两带,大的用genome sequence怎么解释都
不通,比预计的条带(小带)大20kd左右,后来用sumo,磷酸化啊,糖基化啊一一检测
过去,什么都不是,现在还是不知道什么原因。
还碰到一个情况是把内源蛋白交联,发现有多一条带,大20kd左右,以为交联到了新蛋
白,质谱打了两次,除了这个蛋白序列外没有其它的。问不少人,都说构象的变化导致
20kd的迁移从来没有出现过。迄今为止还没有很让我信服的解释。

【在 v**p 的大作中提到】
: 请教大家,把一个蛋白其中的一个氨基酸进行点突变之后,western检测的时候发现分
: 子量大了20KD左右,有可能是啥原因? 测序没有问题,抗体也能识别。
: 谢谢

f******s
发帖数: 288
26
能说一下你是把什么 氨基酸变成什么了么 ? (如果结构已经出来了的话) 大体在什
么结构 region ? 看看是不是容易被modification target的点,或者容易改变蛋白
的 folding 或者charge 的位置?
我觉得在e coli 里的表达也是一个办法,看看是不是也多了那20kd,至少可以排除
modification。

【在 v**p 的大作中提到】
: 请教大家,把一个蛋白其中的一个氨基酸进行点突变之后,western检测的时候发现分
: 子量大了20KD左右,有可能是啥原因? 测序没有问题,抗体也能识别。
: 谢谢

v**p
发帖数: 15
27
谢谢大家的热烈讨论,这几天比较忙,所以没有上来
情况是这样的,我是把R突变成S,这个蛋白的结果现在还不知道,但是这个位点据坐结
构的合作实验室说很可能与该蛋白形成2聚体有关系。

【在 f******s 的大作中提到】
: 能说一下你是把什么 氨基酸变成什么了么 ? (如果结构已经出来了的话) 大体在什
: 么结构 region ? 看看是不是容易被modification target的点,或者容易改变蛋白
: 的 folding 或者charge 的位置?
: 我觉得在e coli 里的表达也是一个办法,看看是不是也多了那20kd,至少可以排除
: modification。

s********n
发帖数: 2939
28
你不是跑的SDS-PAGE吗?理论上dimer应该不存在吧。

【在 v**p 的大作中提到】
: 谢谢大家的热烈讨论,这几天比较忙,所以没有上来
: 情况是这样的,我是把R突变成S,这个蛋白的结果现在还不知道,但是这个位点据坐结
: 构的合作实验室说很可能与该蛋白形成2聚体有关系。

v**p
发帖数: 15
29
应该不可能是dimer,而且这个protein有100kd 左右

【在 s********n 的大作中提到】
: 你不是跑的SDS-PAGE吗?理论上dimer应该不存在吧。
p********i
发帖数: 116
30
S磷酸化后被其他东西修饰?
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p********i
发帖数: 116
31
又查了一下,还真有phosphorylation dependent sumoylation。
s******s
发帖数: 13035
32
你们还在讨论这个啊。我来说一句,大家都在说突变了以后多修饰了,
这种可能性当然有,但是也不大。另一种可能性是突变以后少修饰了。比如
强负电的糖基化,正常蛋白虽然比较大,但是跑的快;突变蛋白少了这个修
饰,虽然小了,但是看起来更大

【在 p********i 的大作中提到】
: S磷酸化后被其他东西修饰?
1 (共1页)
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