s******a 发帖数: 472 | |
s******s 发帖数: 13035 | 2 以前ms讨论过。我们用lipofectamin ltx
【在 s******a 的大作中提到】 : 有没有同志有经验?
|
s*********t 发帖数: 600 | |
s******a 发帖数: 472 | 4 谢谢两位
我决定先试试lipofectamine 2000
(实验室刚好有)
【在 s*********t 的大作中提到】 : 不难的,跟转普通质粒差不多。 : http://www.nature.com/nmeth/journal/v5/n5/abs/nmeth.1199.html : Lipofectamine 2000都可以的 : http://www.nature.com/nmeth/journal/v5/n5/extref/nmeth.1199-S1. : 详细的protocol,照着做就行了。
|
s******s 发帖数: 13035 | 5 ,其实效率不重要,反正最后你多半挑克隆,有那么几个就行了
【在 s******a 的大作中提到】 : 谢谢两位 : 我决定先试试lipofectamine 2000 : (实验室刚好有)
|
s******a 发帖数: 472 | 6 实在不好意思,又把这个帖子顶起来。
从国内回来一个月了,一直在转我的BAC DNA,一直在失败。
我想总结一下失败的经验,并且继续求教大家:
我需要转染的细胞是Hepa 1-6,小鼠肝癌细胞,8-well plate 每孔种10000个细胞 ,
第二天转染。固定lipofectamine用量(量大毒性大),优化的主要是DNA和
lipofectamine的比例。每孔转10 ng 到数 ug之间的range都试过,没有能够work的。
用普通质粒作为阳性对照,转染效率相当高,80-90%是有的。
这篇nature method文章用lipofectamine转BAC到小鼠ES细胞,10 cm2 的碟用10 ul
lipo转150-350 ng BAC DNA(protocol在supplementary,但是有typo,写的是150-350
ug)。我和文章作者email也联系过,他们转染的效率也只有1-2%。
所以现在唯一能确定的是转BAC DNA(我的约250kb)还是比普通质粒要难很多的。目前
对于lipo2000也已经没有idea了。
我现在开始尝试电转,第一次参数不合适细胞全死了,接下去准备降低电压和电容再试
试。
做过BAC转染的能否指点一下呢?
题外话:
实验室另一PhD,之前用lipo转过BAC,一开始口口声声他的protocol工作(同样的细胞
),不让我优化,我最后实在转不出来才开始优化。后来,我得知他所谓work就是8-
well nunc一个well中有5个阳性细胞(转染后48小时,这时候细胞已经很密)。就这他
还高高上上的教育我,有1个细胞就可以了。
【在 s*********t 的大作中提到】 : 不难的,跟转普通质粒差不多。 : http://www.nature.com/nmeth/journal/v5/n5/abs/nmeth.1199.html : Lipofectamine 2000都可以的 : http://www.nature.com/nmeth/journal/v5/n5/extref/nmeth.1199-S1. : 详细的protocol,照着做就行了。
|
s******s 发帖数: 13035 | 7 确实有一个细胞转上就行了。效率低是肯定的
350
【在 s******a 的大作中提到】 : 实在不好意思,又把这个帖子顶起来。 : 从国内回来一个月了,一直在转我的BAC DNA,一直在失败。 : 我想总结一下失败的经验,并且继续求教大家: : 我需要转染的细胞是Hepa 1-6,小鼠肝癌细胞,8-well plate 每孔种10000个细胞 , : 第二天转染。固定lipofectamine用量(量大毒性大),优化的主要是DNA和 : lipofectamine的比例。每孔转10 ng 到数 ug之间的range都试过,没有能够work的。 : 用普通质粒作为阳性对照,转染效率相当高,80-90%是有的。 : 这篇nature method文章用lipofectamine转BAC到小鼠ES细胞,10 cm2 的碟用10 ul : lipo转150-350 ng BAC DNA(protocol在supplementary,但是有typo,写的是150-350 : ug)。我和文章作者email也联系过,他们转染的效率也只有1-2%。
|
s******a 发帖数: 472 | 8 问题是现在一个细胞也转不上:(
【在 s******s 的大作中提到】 : 确实有一个细胞转上就行了。效率低是肯定的 : : 350
|
s******s 发帖数: 13035 | 9 你得细胞转普通质粒啥的好转么?有的细胞难搞
我一般也就转转fibroblast, 还是很容易的
【在 s******a 的大作中提到】 : 问题是现在一个细胞也转不上:(
|
s******a 发帖数: 472 | 10 非常好,80-90%,你没有仔细读我上面的帖子啊。
【在 s******s 的大作中提到】 : 你得细胞转普通质粒啥的好转么?有的细胞难搞 : 我一般也就转转fibroblast, 还是很容易的
|
|
|
l***y 发帖数: 638 | 11 1% efficiency is good enough, my cells can't even get 1%.
I have tried both electroporation and nucleofection for BAC, both work fine.
nucleofection is better and easier because reagents and parameters are
already optimized with the commerial kit.
350
【在 s******a 的大作中提到】 : 实在不好意思,又把这个帖子顶起来。 : 从国内回来一个月了,一直在转我的BAC DNA,一直在失败。 : 我想总结一下失败的经验,并且继续求教大家: : 我需要转染的细胞是Hepa 1-6,小鼠肝癌细胞,8-well plate 每孔种10000个细胞 , : 第二天转染。固定lipofectamine用量(量大毒性大),优化的主要是DNA和 : lipofectamine的比例。每孔转10 ng 到数 ug之间的range都试过,没有能够work的。 : 用普通质粒作为阳性对照,转染效率相当高,80-90%是有的。 : 这篇nature method文章用lipofectamine转BAC到小鼠ES细胞,10 cm2 的碟用10 ul : lipo转150-350 ng BAC DNA(protocol在supplementary,但是有typo,写的是150-350 : ug)。我和文章作者email也联系过,他们转染的效率也只有1-2%。
|
s******a 发帖数: 472 | 12 Thanks! I would have a try on nucleofection.
fine.
【在 l***y 的大作中提到】 : 1% efficiency is good enough, my cells can't even get 1%. : I have tried both electroporation and nucleofection for BAC, both work fine. : nucleofection is better and easier because reagents and parameters are : already optimized with the commerial kit. : : 350
|
h******y 发帖数: 351 | 13 我建议你尝试几种不同的转染试剂,这比尝试DNA和lipofectamine的不同比例效率要高
。特定的转染试剂有时候在你的细胞株中就是不WORK,你怎么试也得不到好的效果。转
染中,DNA的量对结果影响最小,如果你用100ng的BAC DNA,即使是300Kb的大BAC,你也
有几亿个copy了,每个细胞能分到几十万个。
所以我建议你固定DNA的量,改变转染试剂的用量。
常用的转染试剂比如lipofectamine,lipofectamine 2000,FuGene 6, FuGene HD和
PEI都可以拿来试试。按照厂家建议的常用组合,每种试剂试3-4种就行了。这些试剂都
不贵。比起你1个月的时间来,都是小钱。
另外你用的是8-well plate?是不是typo?是6-well?试的时候用24-well就行了,这
样可以节省试剂,而且可以多试几种组合。细胞的接种密度也很重要,多试几个,大致
保证24小时后细胞密度在20-60% (1-3倍的初始接种密度差)。
350
【在 s******a 的大作中提到】 : 实在不好意思,又把这个帖子顶起来。 : 从国内回来一个月了,一直在转我的BAC DNA,一直在失败。 : 我想总结一下失败的经验,并且继续求教大家: : 我需要转染的细胞是Hepa 1-6,小鼠肝癌细胞,8-well plate 每孔种10000个细胞 , : 第二天转染。固定lipofectamine用量(量大毒性大),优化的主要是DNA和 : lipofectamine的比例。每孔转10 ng 到数 ug之间的range都试过,没有能够work的。 : 用普通质粒作为阳性对照,转染效率相当高,80-90%是有的。 : 这篇nature method文章用lipofectamine转BAC到小鼠ES细胞,10 cm2 的碟用10 ul : lipo转150-350 ng BAC DNA(protocol在supplementary,但是有typo,写的是150-350 : ug)。我和文章作者email也联系过,他们转染的效率也只有1-2%。
|
s*********t 发帖数: 600 | |
s******a 发帖数: 472 | |
s******s 发帖数: 13035 | 16 以前ms讨论过。我们用lipofectamin ltx
【在 s******a 的大作中提到】 : 有没有同志有经验?
|
s*********t 发帖数: 600 | |
s******a 发帖数: 472 | 18 谢谢两位
我决定先试试lipofectamine 2000
(实验室刚好有)
【在 s*********t 的大作中提到】 : 不难的,跟转普通质粒差不多。 : http://www.nature.com/nmeth/journal/v5/n5/abs/nmeth.1199.html : Lipofectamine 2000都可以的 : http://www.nature.com/nmeth/journal/v5/n5/extref/nmeth.1199-S1. : 详细的protocol,照着做就行了。
|
s******s 发帖数: 13035 | 19 ,其实效率不重要,反正最后你多半挑克隆,有那么几个就行了
【在 s******a 的大作中提到】 : 谢谢两位 : 我决定先试试lipofectamine 2000 : (实验室刚好有)
|
s******a 发帖数: 472 | 20 实在不好意思,又把这个帖子顶起来。
从国内回来一个月了,一直在转我的BAC DNA,一直在失败。
我想总结一下失败的经验,并且继续求教大家:
我需要转染的细胞是Hepa 1-6,小鼠肝癌细胞,8-well plate 每孔种10000个细胞 ,
第二天转染。固定lipofectamine用量(量大毒性大),优化的主要是DNA和
lipofectamine的比例。每孔转10 ng 到数 ug之间的range都试过,没有能够work的。
用普通质粒作为阳性对照,转染效率相当高,80-90%是有的。
这篇nature method文章用lipofectamine转BAC到小鼠ES细胞,10 cm2 的碟用10 ul
lipo转150-350 ng BAC DNA(protocol在supplementary,但是有typo,写的是150-350
ug)。我和文章作者email也联系过,他们转染的效率也只有1-2%。
所以现在唯一能确定的是转BAC DNA(我的约250kb)还是比普通质粒要难很多的。目前
对于lipo2000也已经没有idea了。
我现在开始尝试电转,第一次参数不合适细胞全死了,接下去准备降低电压和电容再试
试。
做过BAC转染的能否指点一下呢?
题外话:
实验室另一PhD,之前用lipo转过BAC,一开始口口声声他的protocol工作(同样的细胞
),不让我优化,我最后实在转不出来才开始优化。后来,我得知他所谓work就是8-
well nunc一个well中有5个阳性细胞(转染后48小时,这时候细胞已经很密)。就这他
还高高上上的教育我,有1个细胞就可以了。
【在 s*********t 的大作中提到】 : 不难的,跟转普通质粒差不多。 : http://www.nature.com/nmeth/journal/v5/n5/abs/nmeth.1199.html : Lipofectamine 2000都可以的 : http://www.nature.com/nmeth/journal/v5/n5/extref/nmeth.1199-S1. : 详细的protocol,照着做就行了。
|
|
|
s******s 发帖数: 13035 | 21 确实有一个细胞转上就行了。效率低是肯定的
350
【在 s******a 的大作中提到】 : 实在不好意思,又把这个帖子顶起来。 : 从国内回来一个月了,一直在转我的BAC DNA,一直在失败。 : 我想总结一下失败的经验,并且继续求教大家: : 我需要转染的细胞是Hepa 1-6,小鼠肝癌细胞,8-well plate 每孔种10000个细胞 , : 第二天转染。固定lipofectamine用量(量大毒性大),优化的主要是DNA和 : lipofectamine的比例。每孔转10 ng 到数 ug之间的range都试过,没有能够work的。 : 用普通质粒作为阳性对照,转染效率相当高,80-90%是有的。 : 这篇nature method文章用lipofectamine转BAC到小鼠ES细胞,10 cm2 的碟用10 ul : lipo转150-350 ng BAC DNA(protocol在supplementary,但是有typo,写的是150-350 : ug)。我和文章作者email也联系过,他们转染的效率也只有1-2%。
|
s******a 发帖数: 472 | 22 问题是现在一个细胞也转不上:(
【在 s******s 的大作中提到】 : 确实有一个细胞转上就行了。效率低是肯定的 : : 350
|
s******s 发帖数: 13035 | 23 你得细胞转普通质粒啥的好转么?有的细胞难搞
我一般也就转转fibroblast, 还是很容易的
【在 s******a 的大作中提到】 : 问题是现在一个细胞也转不上:(
|
s******a 发帖数: 472 | 24 非常好,80-90%,你没有仔细读我上面的帖子啊。
【在 s******s 的大作中提到】 : 你得细胞转普通质粒啥的好转么?有的细胞难搞 : 我一般也就转转fibroblast, 还是很容易的
|
l***y 发帖数: 638 | 25 1% efficiency is good enough, my cells can't even get 1%.
I have tried both electroporation and nucleofection for BAC, both work fine.
nucleofection is better and easier because reagents and parameters are
already optimized with the commerial kit.
350
【在 s******a 的大作中提到】 : 实在不好意思,又把这个帖子顶起来。 : 从国内回来一个月了,一直在转我的BAC DNA,一直在失败。 : 我想总结一下失败的经验,并且继续求教大家: : 我需要转染的细胞是Hepa 1-6,小鼠肝癌细胞,8-well plate 每孔种10000个细胞 , : 第二天转染。固定lipofectamine用量(量大毒性大),优化的主要是DNA和 : lipofectamine的比例。每孔转10 ng 到数 ug之间的range都试过,没有能够work的。 : 用普通质粒作为阳性对照,转染效率相当高,80-90%是有的。 : 这篇nature method文章用lipofectamine转BAC到小鼠ES细胞,10 cm2 的碟用10 ul : lipo转150-350 ng BAC DNA(protocol在supplementary,但是有typo,写的是150-350 : ug)。我和文章作者email也联系过,他们转染的效率也只有1-2%。
|
s******a 发帖数: 472 | 26 Thanks! I would have a try on nucleofection.
fine.
【在 l***y 的大作中提到】 : 1% efficiency is good enough, my cells can't even get 1%. : I have tried both electroporation and nucleofection for BAC, both work fine. : nucleofection is better and easier because reagents and parameters are : already optimized with the commerial kit. : : 350
|
h******y 发帖数: 351 | 27 我建议你尝试几种不同的转染试剂,这比尝试DNA和lipofectamine的不同比例效率要高
。特定的转染试剂有时候在你的细胞株中就是不WORK,你怎么试也得不到好的效果。转
染中,DNA的量对结果影响最小,如果你用100ng的BAC DNA,即使是300Kb的大BAC,你也
有几亿个copy了,每个细胞能分到几十万个。
所以我建议你固定DNA的量,改变转染试剂的用量。
常用的转染试剂比如lipofectamine,lipofectamine 2000,FuGene 6, FuGene HD和
PEI都可以拿来试试。按照厂家建议的常用组合,每种试剂试3-4种就行了。这些试剂都
不贵。比起你1个月的时间来,都是小钱。
另外你用的是8-well plate?是不是typo?是6-well?试的时候用24-well就行了,这
样可以节省试剂,而且可以多试几种组合。细胞的接种密度也很重要,多试几个,大致
保证24小时后细胞密度在20-60% (1-3倍的初始接种密度差)。
350
【在 s******a 的大作中提到】 : 实在不好意思,又把这个帖子顶起来。 : 从国内回来一个月了,一直在转我的BAC DNA,一直在失败。 : 我想总结一下失败的经验,并且继续求教大家: : 我需要转染的细胞是Hepa 1-6,小鼠肝癌细胞,8-well plate 每孔种10000个细胞 , : 第二天转染。固定lipofectamine用量(量大毒性大),优化的主要是DNA和 : lipofectamine的比例。每孔转10 ng 到数 ug之间的range都试过,没有能够work的。 : 用普通质粒作为阳性对照,转染效率相当高,80-90%是有的。 : 这篇nature method文章用lipofectamine转BAC到小鼠ES细胞,10 cm2 的碟用10 ul : lipo转150-350 ng BAC DNA(protocol在supplementary,但是有typo,写的是150-350 : ug)。我和文章作者email也联系过,他们转染的效率也只有1-2%。
|
s*********t 发帖数: 600 | |
s******a 发帖数: 472 | 29 不是typo,8-well Nunc plate,和ibidi差不多,做imaging用。
谢谢你的建议。
【在 h******y 的大作中提到】 : 我建议你尝试几种不同的转染试剂,这比尝试DNA和lipofectamine的不同比例效率要高 : 。特定的转染试剂有时候在你的细胞株中就是不WORK,你怎么试也得不到好的效果。转 : 染中,DNA的量对结果影响最小,如果你用100ng的BAC DNA,即使是300Kb的大BAC,你也 : 有几亿个copy了,每个细胞能分到几十万个。 : 所以我建议你固定DNA的量,改变转染试剂的用量。 : 常用的转染试剂比如lipofectamine,lipofectamine 2000,FuGene 6, FuGene HD和 : PEI都可以拿来试试。按照厂家建议的常用组合,每种试剂试3-4种就行了。这些试剂都 : 不贵。比起你1个月的时间来,都是小钱。 : 另外你用的是8-well plate?是不是typo?是6-well?试的时候用24-well就行了,这 : 样可以节省试剂,而且可以多试几种组合。细胞的接种密度也很重要,多试几个,大致
|